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外泌体的提取方法在外泌体载药系统中应用——微流控技术。微流控是利用微纳米级尺寸的管道来处理和操控流体所涉及的一门技术,其在外泌体分离方面的应用受到越来越多学者的关注。Jie等人开发了一种三维纳米结构微流控芯片,微柱阵列通过化学沉积将交叉多壁碳纳米管功能化,然后其就可以识别特定的分子(CD63)并利用独特拓扑纳米材料高效的捕获外泌体。Wunsch等人利用硅工艺生产纳米级确定性侧向位移(Nano-DLD)芯片,得到了均匀的间隙尺寸,该芯片可以灵敏地将20~110nm的颗粒分离。该研究证明了外泌体基于大小的位移,从而揭示了利用芯片分选和量化纳米级生物胶体的潜力。间充质干细胞外泌体能通过装载miＲ-132zhiliao心肌缺血。辽宁组织样本外泌体载药实验服务

间充质干细胞外泌体（MSC-Exo）在外泌体载药中作为药物递送的载体具有独特优势。目前临床上普遍使用MSCs的原代细胞，虽然其可以产生大量的外泌体，但是对于大规模生产来说，它的增殖能力有限，产生的外泌体可能具有批次间的差异。Chen等人发现，使用c-myc转染人胚胎干细胞衍生的间充质干细胞(hESC-MSC)，能够在不影响外泌体生产质量的前提下，提高MSCs的增殖率，缩短生产时间。转染的hESC-MSC能够供应毫克范围内的外泌体，为生产具有生物学效益的外泌体提供了一定的可行性。此外，还可以对外泌体进行功能化修饰，进一步增强外泌体的作用优势。外泌体的功能化修饰能够延长外泌体的循环时间、增强外泌体在细胞质的递送效率和促使外泌体具有更强的靶向性。河南整体实验外泌体载药实验咨询问价许多抗ai药物、基因药物及抗yan药物均可载入外泌体中。

大分子蛋白类药物可以通过以下方法进行外泌体载药。Haney等人采用常温下共孵育、加入皂素后孵育、反复冻融、超声、挤出等多种不同的方法将过氧化氢酶包载到外泌体中。结果显示，外泌体通过超声和挤出两种方式句有较高的载药量，分别为26.1％和22.2％，通过被动扩散方式的载药量jin为4.9％，但当加入句有透皮促进作用的皂素后，外泌体的载药量会明显提高至18.5％。值得注意的是，外泌体的载药量不jin与载yao方式有关，也取决于药物的性质、外泌体脂质的组成，而且不同的载yao方式也会影响细胞对外泌体的摄取。

采用外泌体作为药物载体，制备一种装载连翘酯苷A(FTA)的外泌体递药系统。细胞摄取实验的结果表明，A549细胞可以摄取FTA-Exos，并且能维持长时间的稳定，延长了半衰期，明显的提高了连翘酯苷A的生物利用度，为研究连翘酯苷A体外抗中流转移作用打下基础。经典划痕实验结果表明，FTA-Exos组对于A549细胞的迁移抑制率高达90%以上，明显高于连翘酯苷A组迁移抑制率，证实含药外泌体具有更好的体外抑制A549细胞迁移效果。成功建立了FTA-Exos药物递送系统，制备的FTA-Exos性质稳定优越，明显提高连翘酯苷A的生物利用度，并具有更好的抑制A549细胞迁移作用。HA修饰的牛奶外泌体载药体系可将药物靶向递送至CD44高表达的中流细胞中，提高对Dox的摄取效率。

外泌体载药系统中外泌体提取的方法有很多种，有差速超高速离心法、超滤法、试剂盒提取方法、磁珠免疫法等，但单一外泌体分离方法都有其不可解决的弊端，而联合不同的分离方法可得到更纯净、更丰富的外泌体。在装载连翘酯苷A(FTA)的外泌体递药系统的功效中的研究中，采用了差速离心法和超滤法提取外泌体，先使用超滤管浓缩细胞上清液，富集外泌体，再使用超高速离心提取外泌体，缩减了离心次数和时间，提高了外泌体提取效率，且整个过程简单易操作。同时采用低温超声孵育的方法制备FTA-Exos递药系统。外泌体内源性载yao方式即先将药物载入供体细胞中，当药物分选进入外泌体并释放外泌体后分离纯化而获。河南外泌体载药实验服务

外泌体载药药物载入方式多种多样，包括被动方式和主动方式两类。辽宁组织样本外泌体载药实验服务

中流坏死因子相关凋亡诱导配体(TNFrelatedapoptosisinducedligand，TＲAIL)能够在多种中流细胞中诱导选择性凋亡，而对正常细胞无毒性作用，已经成为临床前研究中有发展前景的抗中流药物之一。Shamili等人利用非病毒载体将编码TＲAIL-GFP的质粒载入间充质干细胞（MSCs）。研究结果表明，MSCs衍生的负载TＲAIL的外泌体(Exo TＲAIL)通过促使ai细胞大量坏死抑制黑色素瘤进展，并且其抗中流活性呈现剂量依赖性。间充质干细胞外泌体（MSC-Exo）还能够通过递送内源性或者外源性的miＲNA或蛋白质，zhiliao其他多种中流。辽宁组织样本外泌体载药实验服务

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